Ir al contenido principal Ir al menú de navegación principal Ir al pie de página del sitio
Publicado: 2022-10-20

Phosphorus Balance in a Saline soil Cultivated with Sugar Beet (Beta vulgaris L. subsp. Vulgaris var. altissima Döll)

Universidad Privada Antenor Orrego
Universidad Privada Antenor Orrego
Agrolab
costa peruana cultivares nutrientes suelo salino valle irrigado

Resumen

En los valles irrigados de la costa árida peruana, en más del 30 % de su superficie, los suelos están afectados por la salinidad o mal drenaje y no permiten el desarrollo de la caña de azúcar por tener baja tolerancia a la salinidad. Para esta región, la remolacha azucarera puede ser una alternativa para la producción de azúcar, ya que tiene tolerancia a altas concentraciones de sales. Además, sus raíces pueden almacenar mayor concentración de sacarosa (superior a 18 % de su peso fresco) que la caña y puede producir más azúcar por hectárea/año. El objetivo de este trabajo fue cuantificar el balance del fósforo en el suelo, con el fin de encontrar si es necesaria su aplicación en la remolacha azucarera. Se evaluaron cinco cultivares monogermen, desarrollados en un suelo aluvial (Entisols) altamente salino (5,38-22,5 dS/m) de la Empresa Azucarera Casa Grande. El experimento se hizo en bloques completos al azar, con cinco tratamientos y seis repeticiones. El campo se regó con agua de pozo y se fertilizó con urea (180 kg/ha de N). Se encontró que en estos suelos marginales la remolacha azucarera produce altos rendimientos (81,73 t/ha) de raíces para la producción de azúcar o alcohol. Realizado el balance entre las ganancias y pérdidas de P, se encontró que se incorporan al suelo 94,4 kg/ha de P y que se pierden del mismo 63,52 kg/ha de P, habiendo superado las ganancias a las pérdidas en 30,88 kg/ha de P, lo que hace innecesaria la aplicación de este elemento en este tipo de suelos y en este cultivo.

Valdivia Vega, S., J. Pinna Cabrejos, y S. Valdivia Salazar. «Phosphorus Balance in a Saline Soil Cultivated With Sugar Beet (Beta Vulgaris L. Subsp. Vulgaris Var. Altissima Döll)». Ciencia Y Tecnología Agropecuaria, vol. 23, n.º 3, octubre de 2022, doi:10.21930/rcta.vol23_num3_art:2614.

Abadía, J., Rao, I. M., & Terry, N. (1987a). Thylakoid structure and function in relation to leaf phosphate status in sugar beet. En J. Biggins (Ed.), Progress in photosynthesis research (pp. 755-758). Springer, Dordrecht. https://doi.org/10.1007/978-94-017-0516-5_157

Abadía, J., Rao, I. M., & Terry, N. (1987b). Changes in leaf phosphate status have only small effects on the photochemical of sugar beet leaves. Plant Science, 50(1), 49-55. https://doi.org/10.1016/0168-9452(87)90029-X

Alva, C., van Alphen, J., de la Torre, A., & Manrique, L. (1976). Problemas de drenaje y salinidad de la costa peruana. International Institute for Land Reclamation and Improvement. [Boletín N.°16]. INLI.

Belouchrani, A. S., Latati, M., Ounane, S. M., Drouiche, N., & Lounici, H. (2020). Study of the interaction salinity: Phosphorus fertilization on Sorghum. Journal of Plant Growth Regulation, 39, 1205-1212. https://doi.org/10.1007/s00344-019-10057-4

Bertsch, F., Bejarano, J. A., & Corrales, M. (2005). Correlación entre las soluciones extractoras KCl-Olsen Modificado y Mehlich 3, usadas en los laboratorios de suelos de Costa Rica. Agronomía Costarricense, 29(3), 137-142. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=43626961016

Bridgham, S. D., Updegraff, K., & Pastor, J. (1998). Carbon, nitrogen, and phosphorus mineralization in northern wetlands. Ecology, 79(5), 1545-1561. https://doi.org/10.1890/0012-9658(1998)079[1545:CNAPMI]2.0.CO;2

Castellanos, J. Z. (2014). Manejo y corrección de la acidez de los suelos [Notas técnicas]. Fertilab.

Chen, J., Liu, Y., Ni, J., Wang, Y., Bai, Y., Shi, J., Gan, J., Wu, Z., &Wu, P. (2011). OsPHF1 regulates the plasma membrane localization of low-and high-affinity inorganic phosphate transporters and determines inorganic phosphate uptake and translocation in rice. Plant Physiology, 157(1), 269-278. https://doi.org/10.1104/pp.111.181669

Çimrin, K. M., Türkmen, O., Turan, M., & Tuncer, B. (2010). Phosphorus and humic acid application alleviate salinity stress of pepper seedlings. African Journal of Biotechnology, 9(36), 5845-5851. https://www.ajol.info/index.php/ajb/article/view/92903

Ding, Z., Kheir, A. M. S., Ali, M. G. M., Ali, O. A. M., Abdelaal, A. I. N., Lin, X., Zhou, Z., Wang, B., Liu, B., & He, Z. (2020). The integrated effect of salinity, organic amendments, phosphorus fertilizers, and deficit irrigation on soil properties, phosphorus fractionation and wheat productivity. Scientific Reports, 10, 2736. https://doi.org/10.1038/s41598-020-59650-8

Estefan, G., Sommer, R., & Ryan, J. (2013). Methods of soil, plant, and water analysis: A manual for the West Asia and North Africa region. International Center for Agricultural Research in the Dry Areas.

Fassbender, H. W. (1968). Química de suelos. Instituto Interamericano de Ciencias Agrícolas de la OEA (IICA); Centro de Enseñanza e Investigación.

Fick, G. W., Loomis, R. S., & Williams, W. A. (1983). Remolacha Azucarera. En L.T. Evans (Ed.), Fisiología de los cultivos (pp. 281-320). Editorial Hemisferio Sur.

Geng, G., Wang, G., Stevanato, P., Lv, C., Wang, Q., Yu, L., & Wang, Y. (2021). Physiological and proteomic analysis of different molecular mechanisms of sugar beet response to acidic and alkaline pH environment. Frontiers in Plant Science, 12, 682799. https://doi.org/10.3389/fpls.2021.682799

Hadir, S., Gaiser, T., Hüging, H., Athmann, M., Pfarr, D., Kemper, R., Ewert, F., & Seidel, S. (2021). Sugar beet shoot and root phenotypic plasticity to nitrogen, phosphorus, potassium and lime omission. Agriculture, 11(1), 21. https://doi.org/10.3390/agriculture11010021

Heno, S., Viou, L., & Khan, M. (2018). Sugar beet production in France. Sugar Tech, 20, 392-395. https://doi.org/10.1007/s12355-017-0575-x

Hinsinger, P. (2001). Bioavailability of soil inorganic P in the rhizosphere as affected by root-induced chemical changes: a review. Plant and Soil, 273, 173-195. https://doi.org/10.1023/A:1013351617532

Hussain, Z., Khattak, R. A., Irshad, M., & Mahmood, Q. (2014). Sugar beet (Beta vulgaris L.) response to diammonium phosphate and potassium sulphate under saline-sodic conditions. Soil Use and Management, 30(3), 320-327. https://doi.org/10.1111/sum.12132

Larsen, E. (1980). La remolacha: cultivo tolerante a la salinidad para la costa peruana [Informe especial N.º 96]. Instituto Nacional de Investigaciones Agrarias (INIA).

Liu, J., Uhde-Stone, C., Li, A., Vance, C., & Allan, D. (2001). A phosphate transporter with enhanced expression in proteoid roots of white lupin (Lupinus albus L.). Plant and Soil, 237, 257-266. https://doi.org/10.1023/A:1013396825577

Lorenz, O. A., & Vittum, M. T. (2015). Phosphorus nutrition of vegetable crops and sugar beets. En F. E. Khasawneh, E. C. Sample, & E. J. Kamprath (Eds.), The role of phosphorus in agriculture (pp. 737-762). American Society of Agronomy. https://doi.org/10.2134/1980.roleofphosphorusc.27

Masson, M. L. (1973). Evaluación de la Salinidad en el Perú. Evaluación y control de degradación de tierras en zonas áridas de América Latina. Boletín Latinoamericano sobre Fomento de Tierras y Aguas, 6, 363-384.

Morari, F., Lugato, E., & Giardini, L. (2008). Olsen phosphorus, exchangeable cations and salinity in two long-term experiments of north-eastern Italy and assessment of soil quality evolution. Agriculture, Ecosystems and Environment, 124(1-2), 85-96. https://doi.org/10.1016/j.agee.2007.08.001

Niu, L-A., & Hao, J-M. (2017). Impacts of fertilizer application rate on phosphorus dynamics in salt-affected soil. Plant Soil Environment, 63(10), 468-474. https://doi.org/10.17221/580/2017-PSE

Oberson, A., Friesen, D. K., Rao, I. M., Bühler, S., & Frossard, E. (2001). Phosphorus transformations in an Oxisol under contrasting land-use systems: The role of soil microbial biomass. Plant and Soil, 237(2), 197-210. https://doi.org/10.1023/A:1013301716913

Oehl, F., Frossard, E., Fliessbach, A, Dubois, D., & Oberson, A. (2004). Basal organic phosphorus mineralization in soils under different farming systems. Soil Biology and Biochemistry, 36(4), 667-675. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2003.12.010

Organización de las Naciones Unidas para la Educación, la Ciencia y la Cultura [UNESCO]. (1977). Un nuevo mapa de la distribución mundial de las regiones áridas. La Naturaleza y sus Recursos, 13(3), 2-3.

Pérez-Rosales, A., Galvis-Spínola, A., Bugarín-Montoya, R., Hernández-Mendoza, T. M., Vásquez-Peña, M. A., & Rodríguez-González, A. (2017). Capacidad de intercambio catiónico: descripción del método de la tiourea de plata (Ag TU+n). Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 8(1), 171-177. https://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S2007-09342017000100171

Perrott, K. W., Sarathchandra, S. U., & Waller, J. E. (1990). Seasonal storage and release of phosphorus and potassium by organic matter and the microbial biomass in a high producing pastoral soil. Australian Journal of Soil Research, 28(4), 593-608. https://doi.org/10.1071/SR9900593

Pinna-Cabrejos, J., Valdivia-Salazar, S., & Valdivia-Vega, S. (2016). Nitrogen fertilization and harvesting age effect on sugarcane thresholds for soil salinity. Proceedings of the International Society of Sugar Cane Technologists, 29, 1063-1067. https://bit.ly/3S7P9n0

Rao, I. M., Abadía, J., & Terry, N. (1986). Leaf phosphate status and photosynthesis in vivo: Changes in light scattering and chlorophyll fluorescence during photosynthetic induction in sugar beet leaves. Plant Science, 44(2), 133-137. https://doi.org/10.1016/0168-9452(86)90082-8

Rao, I. M., Abadía, J., & Terry, N. (1987). Leaf phosphate status and its effects on photosynthetic carbon partitioning and export in sugar beet. En J. Biggins (Ed.), Progress in photosynthesis research (pp. 751-754). Springer, Dordrecht. https://doi.org/10.1007/978-94-017-0516-5_156

Rao, I. M., & Terry, N. (1989). Leaf phosphate status, photosynthesis, and carbon partitioning in sugar beet: I. Changes in growth, gas exchange, and Calvin cycle enzymes. Plant Physiology, 90(3), 814-819. https://doi.org/10.1104/pp.90.3.814

Rao, I. M. Arulananthan, A. R., & Terry, N. (1989). Leaf phosphate status, photosynthesis and carbon partitioning in sugar beet: II. Diurnal changes in sugar phosphates, adenylates, and nicotinamide nucleotides. Plan Physiology, 90(3), 820-826. https://doi.org/10.1104/pp.90.3.820

Rao, I. M., Fredeen, A. L., & Terry, N. (1990). Leaf phosphate status, photosynthesis and carbon partitioning in sugar beet: III. Diurnal changes in carbon partitioning and carbo export. Plan Physiology, 92(1), 29-36. https://doi.org/10.1104/pp.92.1.29

Rao, I. M., & Terry, N. (1994). Leaf phosphate status and photosynthesis in vivo: Changes in sugar phosphates, adenalytes and nicotinamide nucleotides during photosynthetic induction in sugar beet. Photosynthetica, 30(2), 243-254.

Rao, I. M., & Terry, N. (1995). Leaf phosphate status, photosynthesis, and carbon partitioning in sugar beet: IV. Changes with time following increased supply of phosphate to low-phosphate plants. Plant Physiology, 107(4), 1313-1321. https://doi.org/10.1104/pp.107.4.1313

Rao, I. M., Barrios, E., Amézquita, E., Friesen, D. K., Thomas, R., Oberson, A., & Singh, B. R. (2004). Soil phosphorus dynamics, acquisition and cycling in crop-pasture-fallow systems in low fertility tropical soils: A review from Latin America. En R. J. Delve, & M. E. Probert (Eds.), Modeling nutrient management in tropical cropping systems (Vol. 114, pp. 126-134), ACIAR Proceedings.

Tosi, J. (1960). Zonas de vida natural en el Perú [Boletín técnico N.º 5]. Instituto Interamericano de Ciencias Agrícolas de la OEA.

Valdivia-Vega, S. (1980). Effect of water table depth on critical sugarcane salt concentration level. Proceedings of the International Society of Sugar Cane Technologists, 17, 209-219. https://bit.ly/3b9PNzP

Valdivia-Vega, S., & Pinna-Cabrejos, J. (1980). Salinity effect in sugarcane response to nitrogen fertilization. Proceedings of the International Society of Sugar Cane Technologists, 17, 421-431. https://bit.ly/3bl31tk

Valdivia-Vega, S., Pinna-Cabrejos., J., & Valdivia-Salazar, S. (2010). Extracción de fósforo y potasio en un suelo aluvial salino, cultivado con remolacha azucarera (Beta vulgaris L.) bajo riego [Ponencia]. XXXV Congreso Nacional de la Ciencia del Suelo y XIII Congreso Internacional de Ciencias Agrícolas, Mexicali, México.

Valdivia-Vega, S., Pinna-Cabrejos, J., & Valdivia-Salazar, S. (2016). Extracción de K+, Ca++, Mg++, y Na+ de suelo salino por la remolacha azucarera [Ponencia]. XXI Congreso Latinoamericano de la Ciencia del Suelo y XV Congreso Ecuatoriano de la Ciencia del Suelo, Quito, Ecuador.

Valdivia-Vega, S., Reynoso-Casquel, J., Pinna-Cabrejos, J., & Larsen-C., E. (2001). Efecto de las sales en la producción de la remolacha azucarera en la costa árida del Perú. Antenor Orrego, 10(16-17), 71-80.

Vance, C. P., Uhde-Stone, C., & Allan, D. L. (2003). Phosphorus acquisition and use: critical adaptations by plants for securing a nonrenewable resource. New Phytologist, 157(3), 423-447. https://doi.org/10.1046/j.1469-8137.2003.00695.x

Wang, Y., Stevanato, P., Yu, L., Zhao, H., Sun, X., Sun, F., Li, J., & Geng, G. (2017). The physiological and metabolic changes in sugar beet seedlings under different levels of salt stress. Journal of Plant Research, 130(6), 1079-1093. https://doi.org/10.1007/s10265-017-0964-y

Zicari, S., Zhang, R., & Kaffka, S. (2019). Sugar beet. En Z. Pan, R. Zhang, & S. Zicari (Eds.), Integrated processing technologies for food and agricultural by-products (pp. 331-351). Academic Press. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-814138-0.00013-7

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Métricas

148 | 59




 

Creative Commons License Creative Commons License

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.

Derechos de autor 2022 Ciencia y Tecnología Agropecuaria