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Características químicas y fermentativas in vitro de dietas para becerros con inclusiones crecientes de vaina y hojas de Moringa oleifera

Universidad Autónoma de Guerrero
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Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo
Universidad Autónma de Guerrero
ganado bovino degradación producción de gas proteínas vegetales trópico

Resumen

Las hojas y las vainas de las leguminosas son una alternativa de alimentación de rumiantes en el trópico. El objetivo del presente estudio fue determinar las características químicas y fermentativas in vitro de vaina y hoja de Moringa oleifera, con inclusiones de 0 %, 10 %, 20 % y 30 % en una dieta integral para becerros de 200 kg de peso vivo. A las hojas, las vainas y las dietas se les determinó materia seca (ms), proteína cruda (pc), fibra detergente (fdn), producción acumulada de gas y metano, degradación de ms (dmd) y fdn (dfdn). El análisis de las variables fue mediante un diseño completamente al azar (10 repeticiones) y la hoja cuantificó 229,4, 465,8 y 204,0 g/kg ms de ms, fdn y pc, respectivamente. Así como, 662,3 y 688,9 g/kg de ms de dms y dfdn (P < 0,05). La dieta con 10 % de hoja de M. oleifera presentó 824,9 y 725,5 g/kg de ms de dmd y dfdn, así como 167 y 58 ml/g ms de gas y metano. En conclusión, la hoja de M. oleifera muestra mejores características químicas y fermentativas in vitro y se puede incluir hasta 30 % de hoja de M. oleifera en dietas integrales para becerros de 200 kg de peso vivo.

Sánchez-Santillán, P., C. Rivera-Cristóbal, N. Torres-Salado, I. Almaraz-Buendía, y J. Herrera-Pérez. «Características químicas Y Fermentativas in Vitro De Dietas Para Becerros Con Inclusiones Crecientes De Vaina Y Hojas De Moringa Oleifera». Ciencia Y Tecnología Agropecuaria, vol. 23, n.º 3, diciembre de 2022, doi:10.21930/rcta.vol23_num3_art:2685.

Almaraz-Buendía, I., García, A. M., Sánchez-Santillán, P., Torres-Salado, N., Herrera-Pérez, J., Bottini-Luzardo, M. B., & Rojas-García, A. R. (2019). Análisis bromatológico y producción de gas in vitro de forrajes utilizados en el trópico seco mexicano. Archivos de Zootecnia, 68(262), 260-266. https://doi.org/10.21071/az.v68i262.4145

Association of Official Analytic Chemists [AOAC]. (1990). Official Methods of Analysis (15th ed). Washington DC, Estados Unidos: Association of Official Analytic Chemist.

Carrera, C. B., Gómez, C. M., & Schwentesius, R. R. (2014). La ganadería bovina de carne en México: un recuento necesario después de la apertura comercial. Chihuahua, México: Universidad Autónoma de Ciudad Juárez. https://elibros.uacj.mx/omp/index.php/publicaciones/catalog/book/9

Casanova-Lugo, F., Cetzal-Ix, W., Díaz-Echeverría, V. F., Chay-Canul, A. J., Oros-Ortega, I., Piñeiro-Vázquez, A. T., & González-Valdivia, N. A. (2018). Moringa oleifera Lam. (Moringaceae): árbol exótico con gran potencial para la ganadería ecológica en el trópico. Agroproductividad, 11(2), 100-105.

Díaz-Fuentes, V. H., Ruíz-Cruz, P. A., Gálvez-Marroquín, L. A., Martínez-Valencia, B. B., & Nájera-Domínguez, W. (2019). Composición nutricional en hojas de 20 genotipos de Moringa oleifera Lam. Agroproductividad, 12(9), 29-34. https://doi.org/10.32854/agrop.v12i9.1141

Doménech, A. G., Durango, V. A., & Ros, B. G. (2017). Moringa oleifera: Revisión sobre aplicaciones y usos en alimentos. Archivos Latinoamericanos de Nutrición, 67(2), 1-11. https://www.alanrevista.org/ediciones/2017/2/art-3/

Du, C., Nan, X., Wang, K., Zhao, Y., & Xiong, B. (2019). Evaluation of the digestibility of steam-exploded wheat straw by ruminal fermentation, sugar yield and microbial structure in vitro. Royal Society of Chemistry Advances, 9, 41775-41782. https://doi.org/10.1039/C9RA08167D

Elghandour, M. M., Vallejo, L. H., Salem, A. Z., Mellado, M., Camacho, L. M., Cipriano, M., Olafadehan, O. A., Olivares, J., & Rojas, S. (2017). Moringa oleifera leaf meal as an environmental friendly protein source for ruminants: Biomethane and carbon dioxide production, and fermentation characteristics. Journal of Cleaner Production, 165, 1229-1238. https://doi.org/10.1016/j.jclepro.2017.07.151

Folkard, G., & Sutherland, J. (1996). Moringa oleifera un árbol con enormes potencialidades. Leicester, Inglaterra: Universidad de Leicester. https://www.yumpu.com/es/document/read/45218270/moringa-oleifera-un-arbol-con-enormes-potencialidades-faoorg

Gang, G., Chen, S., Qiang, L., Shuan-Lin, Z., Tao, S., Cong, W., Yongxin, W., Qing-Fang, X., & Wen-Jie, H. (2020). The effect of lactic acid bacteria inoculums on in vitro rumen fermentation, methane production, ruminal cellulolytic bacteria populations and cellulase activities of corn stover silage. Journal of Integrative Agriculture, 19(3), 838-847. https://doi.org/10.1016/S2095-3119(19)62707-3

García, D. E., Medina, M. G., Humbría, J., Domínguez, C., Baldizán, A., & Cova, L. (2006). Composición proximal, niveles de metabolitos secundarios y valor nutritivo del follaje de algunos árboles forrajeros tropicales. Archivos de Zootecnia, 55(212), 373-384.

González, V. I. (2013). Guaireña (Moringa oleifera). Alternativa forrajera para la ganadería bovina doble propósito en Venezuela. En: Perozo, B. A. (ed). Manejo de pastos y forrajes tropicales (pp. 201-207). Maracaibo, Venezuela: Astro Data, S.A.

Hernández-Morales, J., Sánchez-Santillán, P., Torres-Salado, N., Herrera-Pérez, J., Rojas-García, A. R., Reyes-Vázquez, I., & Mendoza-Núñez, M. A. (2018). Composición química y degradaciones in vitro de vainas y hojas de leguminosas arbóreas del trópico seco de México. Revista Mexicana de Ciencias Pecuarias, 1(9), 105-120. https://doi.org/10.22319/rmcp.v9i1.4332

Herrera-Pérez, J., Vélez-Regino, L., Sánchez-Santillán, P., Torres-Salado, N., Rojas-García, A., & Maldonado-Peralta, M. (2018). Fermentación in vitro de consorcios bacterianos celulolíticos ruminales de búfalos de agua en sustratos fibrosos. MVZ Córdova, 23(3), 6860-6870. https://doi.org/10.21897/rmvz.1374

Hoffman, P. C., Lundberg, K. M., Bauman, L. M., Shaver, R. D., & Contreras-Govea, F. E. (2007). Digestibilidad in vitro del FDN (fibra detergente neutro): el debate de 30 vs 48 horas. Focus on Forage, 5(16), 1-4. https://fyi.extension.wisc.edu/forage/files/2014/01/30vs48esp-FOF.pdf

Khang, D. N., Ngoc, A. D., & Preston, T. R. (2019). Effect of cassava leaf meal and coconut cake on methane production in an in vitro incubation using cassava root pulp and urea as substrate. Livestock Research for Rural Development, 31(8), 128. http://www.lrrd.org/lrrd31/8/khang31128.html

Ku-Vera, J. C., Castelán-Ortega, O. A., Galindo-Maldonado, F. A., Arango, J., Chirinda, N., Jiménez-Ocampo, R., Valencia-Salazar, S. S., Flores-Santiago, E. J., Montoya-Flores, M. D., Molina-Botero, I. C., Piñeiro-Vázquez, A. T., Arceo-Castillo, J. I., Aguilar-Pérez, C. F., Ramírez-Avilés, L., & Solorio-Sánchez, F. J. (2020). Review: Strategies for enteric methane mitigation in cattle fed tropical forages. Animal, 14, s453-s463. https://doi.org/10.1017/S1751731120001780

Luna, M. R., Chacón, M. E., Ramírez, R. J., Álvarez, P. G., Álvarez, P. P., Plúa, P. K., & Álava, M. A. (2015). Rendimiento y calidad de dos especies del género Pennisetum en Ecuador. Revista Electrónica de Veterinaria, 16(8), 1-10. https://www.redalyc.org/pdf/636/63641401005.pdf

McCullough, H. (1967). The determination of ammonia in whole blood by a direct colorimetric method. Clinica Chimical Acta, 17, 297-304. https://doi.org/10.1016/0009-8981(67)90133-7

Mehrez, A. Z., Orskov, E. R., & McDonald, I. (1977). Rates of rumen fermentation in relation to ammonia concentration. British Journal of Nutrition, 38, 437-443. https://doi.org/10.1079/BJN19770108

Melesse, A., Steingass, H., Schollenberger, M., Holstein, J., & Rodehutscord, M. (2017). Nutrient compositions and in vitro methane production profiles of leaves and whole pods of twelve tropical multipurpose tree species cultivated in Ethiopia. Agroforest Systems, 93, 135-147. https://doi.org/10.1007/s10457-017-0110-9

Meza, Z., Olivares, E., Gutiérrez, E., Bernal, H., Aranda, J., Vázquez, R., & Carranza, R. (2016). Crecimiento y producción de biomasa de moringa (Moringa oleifera Lam.) bajo las condiciones climáticas del Noreste de México. Tecnociencia Chihuahua, 10, 143-153. https://vocero.uach.mx/index.php/tecnociencia/article/view/177/541

NRC. (1996). Nutrient requirements of beef cattle (7th edition). Washington, Estados Unidos: National Academies Press.

Ojo, V. O., Adeoye, S. A., Oni, A. O., Adelusi, O. O., Yusuf, K. O., Jalaosho, A. O., Olanite, J. A., & Onifade, O. S. (2017). Valor nutritivo de los recursos alimenticios procesados procedentes de pastos naturales en South-West, Nigeria. Archivos de Zootecnia, 66(256), 469-474. https://doi.org/10.21071/az.v66i256.2761

Quintanilla-Medina, J., Joaquín-Cancino, S., Martínez-González, J., Limas-Martínez, A., López-Aguirre, D., Estrada-Drouaillet, B., & Hernández-Meléndez, J. (2018). Usos de Moringa oleifera Lam. (Moringaceae) en la alimentación de rumiantes. Agroproductividad, 11(2), 89-93. https://core.ac.uk/download/pdf/249320001.pdf

Sánchez-Santillán, P., Meneses-Mayo, M., Miranda-Romero, L. A., Santellano-Estrada, E., & Alarcón-Zúñiga, B. (2015). Fribrinolytic activity and gas production by Pleurotus ostreatus-IE8 and Fomes fomentarius - EUM1 in bagasse cane. MVZ Córdoba, 20(supl. 2015), 4907-4916. https://doi.org/10.21897/rmvz.6

Sánchez-Santillán. P., & Cobos-Peralta, M. A. (2016). In vitro production of volatile fatty acids by reactivated cellulolytic bacteria and total ruminal bacteria in cellulosic substrate. Agrociencia, 50(5), 565-574. https://www.redalyc.org/pdf/302/30246698002.pdf

Sánchez-Santillán, P., Cobos-Peralta, M. A., Hernández-Sánchez, D., Álvarado-Iglesias, A., Espinosa-Victoria, D., & Herrera-Haro, J. G. (2016). Use of activated carbon to preserve lyophilized cellulolytic bacteria. Agrociencia, 50(5), 575-582.

Sánchez-Santillán, P., Torres-Cardona, M. G., Campos-Montiel, R. G., Soriano-Robles, R., Fernández-Luqueño, F., Medina-Pérez, G., Del Razo-Rodríguez, O. E., & Almaraz-Buendía, I. (2018). Potencial de emisión de gases efecto invernadero de plantas forrajeras por fermentación entérica. Agroproductividad, 11(2), 40-45.

Sánchez-Santillán, P., Torres-Salado, N., Herrera-Pérez, J., Rojas-García, A. R., Maldonado-Peralta, M. A., & Ayala-Monter, M. A. (2020). In vitro gas and methane production and dry matter degradation of pumpkin (Cucurbita argyrosperma) silages with pangola grass (Digitaria decumbens) hay. Agroproductividad, 13(11), 95-101. https://doi.org/10.32854/agrop.v13i11.1786

Sánchez-Santillán, P., Wilson-García, C. Y., López-Zerón, N. E., Saavedra-Jiménez, L. A., Maldonado, P. M., & Melo-Trani, M. Y. (2021). Rendimiento, calidad y biogás in vitro en pasto Megathyrsus maximus cv. Aruana con diferente fertilización. Ecosistemas y Recursos Agropecuarios, 8(II), e2957. https://doi.org/10.19136/era.a8nII.2957

Sandoval, G. L., Miranda, R. L., Lara, B. A., Huerta, B. M., Uribe, G. M., & Martínez, M. M. (2016). Fermentación in vitro y la correlación del contenido nutrimental de leucaena asociada con pasto estrella. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 16, 3185-3196. https://doi.org/10.29312/remexca.v0i16.388

SAS. (2003). User’s guide: Statistics. [Software]. Ver. 9.3. Cary, North Carolina., Estados Unidos.

Soltan, Y. A., Hashem, N. M., Morsy, A. S., El-Azrak, K. M., Nour, E., & Sallam, S. M. (2018). Comparative effects of Moringa oleifera root bark and monensin supplementations on ruminal fermentation, nutrient digestibility and growth performance of growing lambs. Animal Feed Science and Technology, 235, 189-201. https://doi.org/10.1016/j.anifeedsci.2017.11.021

Texta, N. J., Sánchez-Santillán, P., Hernández, D. S., Torres-Salado, N., Crosby, M. G., Rojas-García, A. R., Herrera-Pérez, J., & Maldonado-Peralta, M. A. (2019). Uso de disacáridos y carbón activado para preservar consorcios de bacterias ruminales celulolíticas liofilizadas. MVZ Cordoba, 24(3), 7305-7313. https://doi.org/10.21897/rmvz.1412

Torres-Salado, N., Sánchez-Santillán, P., Rojas-García, A. R., Herrera-Pérez, J., & Hernández-Morales, J. (2018). Producción de gases efecto invernadero in vitro de leguminosas arbóreas del trópico seco mexicano. Archivos de Zootecnia, 67(257), 55-59. https://doi.org/10.21071/az.v67i257.3491

Torres-Salado, N., Sánchez-Santillán, P., Rojas-García, R. A., Almaraz-Buendía, I., Herrera-Pérez, J., Reyes-Vázquez, I., & Mayren-Mendoza, F. J. (2019). In vitro gas production and fermentative characteristics of ruminal cellulolytic bacterial consortia of water buffalo (Bubalus bubalis) and Suiz-bu cow. Agrociencia, 53, 145-159. https://agrociencia-colpos.org/index.php/agrociencia/article/view/1775

Van Soest, P. J., Robertson, J., & Lewis, B. (1991). Symposium carbohydrate methodology, metabolism and nutritional in dairy cattle. Journal of Dairy Science, 74, 3583-3597. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(91)78551-2

Vanegas, J. L., González, J., & Carro, M. D. (2017). Influence of protein fermentation and carbohydrate source on in vitro methane production. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 101, e288-e296. https://doi.org/10.1111/jpn.12604

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