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Resumen
Cuatro gramíneas tropicales y una leguminosa se evaluaron para conocer la degradabilidad ruminal del material entero o completo (ME), el residuo insoluble en etanol (RIE) y la pared celular (FDN), mediante las técnicas de producción de gas (in vitro) y degradabilidad en bolsa de nylon (in situ). Se escogieron las gramíneas Dichantium aristatum (Angleton), Brachiaria decumbens (Braquiara), Bothriochloa pertusa (Colosuana o Kikuyina) y Pennisetum clandestinum (Kikuyo), además de la leguminosa Medicago sativa (alfalfa). Las cuatro gramíneas se cosecharon en la edad adecuada para pastoreo (Kikuyo con 56 días de descanso, 30 días para Braquiara, 35 días para Angleton y 35 para Colosuana). La alfalfa se cosechó en floración (60 días de rebrote). La degradabilidad in vitro se determinó mediante la cuantificación de residuo seco a 105 °C, después de 48 horas de incubación de una muestra de 100 mg de cada fracción de forraje y lavado con detergente neutro. La degradabilidad in situ se determinó de acuerdo a las técnica de la bolsa de nylon, en bolsas de poliéster utilizando las mismas fracciones de forraje, con 3,0 g de muestra por bolsa e incubación por 48 horas en el rumen de una vaca Holstein no lactante ni gestante, alimentada con Kikuyo bajo pastoreo libre y permanente. Los porcentajes de materia seca (MS) degradada en las dos técnicas se compararon mediante un análisis de varianza con el procedimiento General Linear Models (GLM) de SAS® para cada fracción. La degradabilidad ruminal en los cuatro forrajes, mediante la técnica in vitro fue superior a la degradabilidad en bolsa (P < 0,01) para todas las fracciones, siendo la correlación entre las dos técnicas alta (0,87, P < 0,001). La degradación total in vitro para los sustratos fue 72,4, 46,3, 78,9, 52,1 y 80,8%, para el ME de alfalfa, Angleton, Brachiaria, Colosuana y Kikuyo, respectivamente. Para el ME en todos los pastos la correlación entre los dos métodos fue de 0,93 (P < 0,01). La degradación in situ del ME fue de 71,7, 26,6, 63,9, 33,4 y 71,4% para Alfalfa, Angleton, Brachiaria, Colosuana y Kikuyo, respectivamente y fue diferente a la degradación in vitro (P < 0,01). La degradación in vitro del RIE fue de 53,2, 43,2, 75,2, 49,1 y 76,4% para los cinco forrajes respectivamente y 53,2, 22,7, 47,2, 27,6, y 61,7% para la degradación in situ del RIE en los cinco forrajes respectivamente, siendo diferentes los dos métodos (P < 0,01). La degradación in vitro de FDN fue 45.7, 47,2, 70,1, 53,2 y 75,0% para cada pasto respectivamente y de: 38,0, 25,8, 42,2, 36,3 y 52,8% para la degradación in situ del FDN en los cinco pastos, respectivamente y los valores fueron diferentes a con respecto al método in vitro (P<0,05). La correlación entre los dos métodos fue: 0,86 para el RIE y 0,74 para FDN en todos los forrajes (P < 0,001 y P < 0,005). Las diferencias entre la degradabilidad in vitro e in situ se pueden atribuir a los procedimientos de lavado de los residuos, a exposición inadecuada de las bolsas a la acción de los microorganismos por compactación del sustrato en la bolsa o a una reducción en la actividad fibrolítica de las bacterias del rumen en las bolsas. Se esperaría que la desaparición del sustrato fuera más alta por el escape de partículas pequeñas a través de los poros de la bolsa y al efecto de la tasa de pasaje dentro del rumen, condiciones que no ocurren en la degradación in vitro.
Luis Carlos Arreaza, Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Agrosavia)
Investigador, Programa Fisiología y Nutrición Animal , C.I. Tibaitatá.Dora Elisa Sánchez, Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Agrosavia)
Investigadora, Programa de Fisiología y Nutrición Animal, C.I. Tibaitatá.Beatriz Abadía, Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Agrosavia)
Investigadora, Directora Laboratorio Nutrición Animal, Programa de Fisiología y Nutrición Animal, C.I. Tibaitatá.AOAC International. 2003. Official Methods of Analysis of AOAC International. 17th Edition, Revision # 2. AOAC International, 481 N. Frederick Ave., Suite 500, Gaithersburg, MD 20877-2417
Bueno, I.C.S.; S. P. Gobbo, A.L. Abdalla and S.L.S. Cabral Filho. 2000. A comparison between in situ and in vitro measurement of rumen degradability of Brazilian Feeds. https://doi.org/10.1017/S1752756200000272
Church, D.C. 1988. El rumiante: fisiología digestiva y nutrición. Editorial Acribia, S. A. Zaragoza (España). p. 305.
Cone, J. W.; A.H., Van Gelder; G.J.W., Visscher and L., Oudshoorn. 1996. Influence of rumen fluid and substrate concentration on fermentation kinetics measured with a fully automated time related gas production apparatus. Anim. Feed Sci. and Technol. 61:113-128. https://doi.org/10.1016/0377-8401(96)00950-9
CORPOICA. 2000. Atlas de los sistemas de producción del trópico bajo colombiano. Plan de Modernización Tecnológica de la ganadería Bovina Colombiana, 2ª ed., CORPOICA, MADR, Colciencias, Fedegán. 44p.
Fox, D.G.; T.P., Tylutki; L.O., Tedeschi; M.E., Van Amburgh; L.E., Chase; A.N., Pell; T.R., Overton y J.B. Russell. 2000. The Net Carbohydrate and Protein System for Evaluating Herd Nutrition and Nutrient Excretion: Model Documentation. Mimeo No. 213, Animal Science Department, Cornell University, Ithaca, NY.
Hall, M.B. 1998. Making nutritional sense of non-structural carbohydrates. 9th Annual Florida Ruminant Nutrition Symposium. Gainsville, Fla. Pp: 108-121.
Hall, M. B.; A.N. Pell y L.E. Chase. 1998. Characteristics of neutral detergent soluble fiber fermentation by mixed ruminal microbes. Anim. Feed Sci. and Technol. 70:23-39. https://doi.org/10.1016/S0377-8401(97)00068-0
Hall, M.B.; B. A. Lewis; P. J. Van Soest y L.E. Chase. 1997. A simple method for estimation of neutral detergent-soluble fiber. J. Sci. Food, Agric. 74:441-449. https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-0010(199708)74:4<441::AID-JSFA813>3.0.CO;2-C
Jung H. G.; D.R. Buxton; R.D. Hatfield y J. Ralph. 1993. Forage Cell Wall Structure and Digestibility. P. 105 https://doi.org/10.2134/1993.foragecellwall
Kaul, V.K. y S.K. Vats. 1998. Essential oil composition of Bothriochloa pertusa and phyletic relationship in aromatic grasses. Biochemical Systematics and Ecology 26(3): 347-356. (India). https://doi.org/10.1016/S0305-1978(97)00103-8
Menke, K.H. y H. Steingass. 1988. Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and in vitro gas production using rumen fluid. Animal Research and Development. Vol. 28:7
Meyer, J.H.F. and R.I. Mackie. 1986. Microbiological evaluation of the intraruminal in sacculus digestion technique. Appl. Environ. Microbiol., 51:622-629. https://doi.org/10.1128/AEM.51.3.622-629.1986
Mertens, D.R. y J.R. Loften. 1980. The effect of starch on forage fiber digestion kineticks in vitro. J. Dairy Sci. 63 : 1437 - 1446. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(80)83101-8
Nozière, P. y B. Michalet-Doreau. 1996. Validation of in sacco method: influence of sampling site, nylon bag or rumen contents, on fibrolytic activity of solid-associated microorganisms. Anim. Feed Sci. and Technol 57, 203-210. https://doi.org/10.1016/0377-8401(95)00851-9
Ørskov, E.R. y I. McDonald. 1979. The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. Journal of Agricultural Science, Cambridge 92: 499-503. https://doi.org/10.1017/S0021859600063048
Ørskov, E R.; F.D. De Hovell y F. Mould. 1980. The use of the nylon bag technique for the evaluation of feedstuffs. Trop. Anim. Prod. 1980 5,3: 195-213.
Pell, A. N. y P. Schofield. 1993. Computerized monitoring of gas production to measure forage digestion in vitro. J. dairy Sci.76:1063-1073. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(93)77435-4
Pell, A.N.; P.H. Doane y P. Schofield. 1997. In vitro digestibility and gas production. In: Campos, O.F., Lizieire, R. S. Figurerido, E.A. (eds.). Simposio sobre tópicos especiais em Zootecnia. Sociedade Brasileira de Zootecnia, Juiz de Fora, MG-Brazil, pp. 110-132.
Pires, S.U., A.T.C. Taketa, G. Grossmann y I.P. Schenkel. 2002. Saponins and sapogenins from Brachiaria decumbens, Stapf. J. Braz. Chem. Soc. Vol. 13, No 2:135-139. https://doi.org/10.1590/S0103-50532002000200002
Pulido, R., C.D. Wood y J.D. Leaver. 1998. Estudio de la cinética de la fermentación in vitro y del residuo no fermentado del forraje disponible en la pradera y del aparentemente consumido por vacas lecheras. Arch. Med. Vet. 30 (2): 101-107. https://doi.org/10.4067/S0301-732X1998000200010
SAS Institute. 1996. SAS/STAT®, User's Guide II. SAS Institute, Cary NC, USA.
Schofield, P. y A.N. Pell. 1995. Validity of using accumulated gas pressure readings to measure forage digestion in vitro: a com¬ parison involving three forages. J. Dairy. Sci. 78:2230-2238. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(95)76850-3
Schofield, P. 2000. Gas production methods. In: Farm Animal Metabolism and Nutrition, Chapter 10. Cab International, UK. pp. 209-232. https://doi.org/10.1079/9780851993782.0209
Theodorou, M.K., B.A. Williams, M.S. Dhanoa, A. B. McAllan y J. France. 1994. A simple gas production method using a pressure transducer to determine the fermentation kinetics of ruminant feeds. Anim. Feed Sci. Technol. 48: 185 -197. https://doi.org/10.1016/0377-8401(94)90171-6
Tilley , J.M.A. y R.A. Terry. 1963. A two stage technique for the in vitro digestion of forage crops. Journal of the British Grassland Society 18: 104-111. https://doi.org/10.1111/j.1365-2494.1963.tb00335.x
Trabalza, M., Msrinucci, B. A. Dehority, and S. C. Loerch. 1992. In vitro and In Vivo Studies of Factors Affecting Digestion of Feeds in Synthetic Fiber Bags' J. Anim. Sci. 70:296-307. https://doi.org/10.2527/1992.701296x
Van Soest, P. J. 1994. Nutritional Ecology of the Ruminant. (2nd Ed.) Cornell University Press, " Ithaca, NY.
Van Soest, P. J., and M.S. Allen. 1993. Limitations of prediction systems for digest¬ibility and ration balancing. Pages 196-210. Silage Production from Seed to Animal. NRAES. Ithaca, N. Y.
Van Soest, P. J., M.E. Van Amburgh y L.O. Tedeschi. 2000. Rumen balance and rates of fiber digestión. Cornell Nutrition Conference for Feed Manufacturers, Rochester, NY. pp. 150-166.
Varel, V. and K.K. Kreikemeier. 1995. Comparison of in vitro and in situ digestibility methods. Technical note. J. Anim. Sci. 73:578-582. https://doi.org/10.2527/1995.732578x
Wang, Y., T. A. McAllister, C.J. Newbold, L.M. Rode, P.R. Cheque, K.J. Cheng. 1998. Effects of Yucca schidigera extract on fermentation and degradation of steroidal saponins in the rumen simulation technique (RUSITEC). Anim. Feed Sci. and Technol. 74: 143-153. https://doi.org/10.1016/S0377-8401(98)00137-0
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