:
Resumen
Para determinar la relación entre estructura histológica y composición química se utilizaron láminas foliares de las gramíneas Bouteloua repens y Bothriochloa pertusa y foliolos de las leguminosas Stylosanthes scabra, Desmodium barbatum y Tephrosia cinerea. Con respecto a las gramíneas, en la estación seca B. pertusa incrementó 197,8% su esclerénquima, lo que explicó 64% de su DIVMS (P<0,001). B. repens exhibió mayores áreas kranz (P<0,01) con un promedio de 19,63%. El área del mesófilo en B. pertusa fue superior en 52,51% (P<0,0001) y se observó que las lluvias incrementaron los tejidos rápidamente degradables en 74,50% (P<0,01). En la estación seca la PC disminuyó en B. pertusa y B. repens en 47,2% y 52,4%, respectivamente; los menores porcentajes de PC los presentó B. repens con 5,63% (P<0,01). En la estación lluviosa la FDN de B. repens (63,98%) superó a B. pertusa (60,18%) (P<0,01). Se reporta una relación inversa entre la FDA y la PC (R2= –0,94%; P<0,01) en las gramíneas. En lluvia y en sequía B. pertusa presentó mayor DIVMS: 72,82% y 69,86% (P<0,01), lo que se explica en 94,2% por la PC y en 94% por el mesófilo (P<0,001). En B. pertusa y en B. repens la lignina explica en 89% (P<0,001) el área del esclerénquima; este tejido, aunque cubre áreas pequeñas de las láminas foliares, incidió directamente en la calidad de las gramíneas explicando 70% de la DEF (P<0,001). Por su parte, en las leguminosas el área de esclerénquima fue mayor en D. barbatum al inicio de sequía (10,09%, P<0,01). La mayor PC fue para T. cinerea con 20,52%, seguida de S. scabra con 16,80% y D. barbatum con 12,52% (P<0.001); la FDN fue mayor (P<0,001) en D. barbatum (38,14%) seguida por T. cinerea (31,14%) y S. scabra (30,15%). T. cinerea presentó en todos los períodos menores FDA y lignina (P<0,001), lo que se refleja en mayores porcentajes de DIVMS (79,71%) y DEF (52,36%) (P<0,001). Los tejidos rápidamente degradables de las leguminosas presentaron una relación inversa con FDA y lignina (74,7% y 95,3% respectivamente; P<0,01); los tejidos no degradables presentaron una relación directa con la lignina y ésta los explica en 81%. El esclerénquima y el xilema tienen un papel definitivo en la DIVMS y la explican en 97,5%; además, el xilema explica en 92% la FDN (P<0,01). El análisis de la estructura histológica es una herramienta muy útil para procesos de selección y manejo de especies forrajeras.
Diego Chamorro, Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Agrosavia)
Programa Nacional de Fisiología y Nutrición Animal, C.I. Tibaitatá.Juan Evangelista Carulla, Universidad Nacional de Colombia
Departamento de Producción Animal. Bogotá D.C.Pablo Cuesta, Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Agrosavia)
Programa Nacional de Fisiología y Nutrición Animal, C.I. Tibaitatá.Akin, D.E. 1993. Perspectives of cell wall biodegradation session synopsis. Forage cell structure and digestibility of forages. Agron¬omy Journal 81: 17-23.
Akin, D.E. 1989. Histological and physi¬cal factors digestibility or forages. Agronomy Journal 81: 17-23. https://doi.org/10.2134/agronj1989.00021962008100010004x
Akin, D.E. 1979. Microscopic evaluation of forages digestion by rumen microorga-nisms review. Journal of Animal Science 48(3): 701-709. https://doi.org/10.2527/jas1979.483701x
Akin, D.E. y Burdick, D. 1975. Percentage of tissue types in tropical an temperate grass leaf blades and degradation of tissues by rumen microorganisms. Crop Science 15: 661-668. https://doi.org/10.2135/cropsci1975.0011183X001500050015x
Akin, D.E. y Burdick, D. 1973. Microanatomical differences of warm-seson grasses revealed by light and electron microscopy. Agronomy Journal 65: 533-537. https://doi.org/10.2134/agronj1973.00021962006500040003x
Akin, E.D.; Robinson, E.L.; Franklin, E.B. y Himmelsbach, S.D. 1977. Changes with maturity in anatomy, histochemistry, chemis¬try and tissue digestibility of Bermudagrass plant parts. Journal Agricultural Food Chemistry. 25(1)179-186. https://doi.org/10.1021/jf60209a034
Akin, D.E. y Robinson, E. 1982. Structure of leaves and stems of arrowleaf acrimson clovers as related to in vitro digestibility. Crop Science 22: 24-29. https://doi.org/10.2135/cropsci1982.0011183X002200010006x
Akin, D.E. y Barton, F.E. 1983. Rumen microbial attachment and degradation of plant cell wall. Feed Proceeding. 42: 114.
Akin, D.E.; Wilson, J.R. y Windham, W.R. 1983. Site and rate of digestion of tissue types in leaves of C3, C4, and C3/C4 interme¬diate Panicum grass species. Crop Science 23: 141-146. https://doi.org/10.2135/cropsci1983.0011183X002300010042x
Akin, D.E.; Brown, R.H. y Rigsby, L.L. 1984. Digestion of stem tissues in Panicum species. Crop Science 24: 769-773. https://doi.org/10.2135/cropsci1984.0011183X002400040033x
Akin, D.E. y L.L. Rigsby. 1985. Degra-dation of Bermuda and orchardgrass by species of ruminal bacteria. Applied and Environmental Microbiology 50: 825-830. https://doi.org/10.1128/AEM.50.4.825-830.1985
Akin, D. E. y Benner, R. 1988. Degra-dation of polysaccharides and lignin by ruminal bacteria and fungi. Applied and Environmental Microbiology 54: 1117-1125. https://doi.org/10.1128/AEM.54.5.1117-1125.1988
Akin, D.E.; Lyon, C.E.; Windham, W.R. y Rigsby, L.L. 1989. Physical degradation of lignified stem tissues by ruminal fungi. Applied and Environmental Microbiology 55: 611-616. https://doi.org/10.1128/AEM.55.3.611-616.1989
Allinson, D.W. y Osbourn, D.F. 1970. The cellulose-lignin complex in forages and its relationship to forage nutritive value. Journal of Agricultural Science 74: 23-26. https://doi.org/10.1017/S0021859600020918
Alves de Brito, C.A.; Alquini, Y.; Rodella R. y Deschamps, C. 1997. Alterações histológicas de três ecotipos de capim elefante (Pennisetum purpureum Schum.), após digestão in vitro. In: Reunaiao Anual da Sociedade Brasileria de Zootecnia. 34, Juiz de Fora-MG. Anais da XXXIV Reuniao da SBZ. 2: 12-14
Alves de Brito, C.A.; Rodella, R.; Deschamps, C. y Alquini, Y. 1999. Anatomia quantitativa e degradacao in vitro de tecidos em cultivares de Capim elefante (Pennisetum purpureum Schum.). Revista Brasileira de Zootecnia 28(2): 223-229. https://doi.org/10.1590/S1516-35981999000200001
AOAC. 1975. Official Methods of Analysis (12th edit). Association of Official Agricultural Chemists, Washington DC. 1094 p.
Barceló, J.C.; Nicolás G.R.; Sabater, B.G. y Sánchez, R.T. 1987. Fisiología vegetal. Cuarta edición. Editorial Pirámide, S.A. Madrid. pp. 161-170.
Becerra. L.N; Barrera, E.T y Marquinez, X.C. 2002. Anatomía y morfología de los órganos vegetativos de plantas vasculares. Unibiblos. Universidad Nacional de Colombia, Bogotá. 276 p.
Carulla, J. y Pabón, M. 2004. Un sistema in vitro para evaluar los efectos de los tani-nos en la degradación de la proteína bajo condiciones ruminales y abomasales. En: Hess y Gómez (eds.). Taller: Taninos en la nutrición de rumiantes en Colombia. CIAT-ETH. 63 p.
Chamorro, D.; García, J.; y Osorio, D. 1996. Recolección y determinación de legu¬minosas espontáneas con potencial forra¬jero adaptadas a zonas ganaderas de clima cálido seco en el departamento del Tolima. Universidad del Tolima. Ibagué, Colombia. 130 p.
Chamorro, D.; Roncallo, B.; Cipagauta, M.; Sánchez, M.; Barros, J.; Arcos, J.; Acero, J.; Hernández J.; Bonilla, R.; Lanao, S.; Vuelvas, S.; Torres, E.; Sierra, M.; Carrero, G.; Romero, H. y Vanegas, M. 2002. Los sistemas silvopastoriles y su impacto en la ganadería del trópico bajo colombiano. Manual técnico. Plan de Modernización Tecnológica de la Ganadería Bovina Colombiana. 98 p.
Edwards, G.E. y Huber, S.C. 1981. The C4 pathway. In: The biochemistry of plants. Photosiynthesis. 8: 237-281. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-675408-7.50012-4
Esau, K. 1977. Anatomy of seed plants. 2nd edition. John Wiley y Sons, Inc. New York. 550 p. https://doi.org/10.2307/2418500
Esau, K. 1985. Anatomía vegetal. 3ª ed. Editorial Omega S.A. Barcelona (España). pp. 25, 26; 99; 168-186; 173-174; 202; 250-290; 296-297; 460-462.
Fahn, A. 1985. Anatomía vegetal. 3ª ed. Ediciones Pirámide, S.A. Madrid. 569 p.
Flores, J.A.; Moore, J.E. y Sollenberger, L.E. 1993. Determinants of forage quality in Pensacola bahiagrass and mott elephant¬grass. Journal of Animal Science 71: 1606-1614. https://doi.org/10.2527/1993.7161606x
Fondevila, M.; Muñoz, G.; Castrillo, C.; Vicente, F. y Martín, S.M. 1998. Procesos implicados en la digestión microbiana de los forrajes de baja calidad. Revista de la Facultad de Agronomía 15: 87-106.
Hanna, W.W.; Monson, W.G. y Burton, G.W. 1973. Histological examination of fresh forage leaves after in vitro digestion. Crop Science 13(1): 98-102. https://doi.org/10.2135/cropsci1973.0011183X001300010031x
Hattersley, P.W. y Watson, L. 1976. C4 grasses: an anatomical criterion for distin¬guishing between NADP-Malic enzymes spe¬cies and PCK or NAD-Malic enzyme species. Australian Journal of Botany 24: 279-308. https://doi.org/10.1071/BT9760297
Jensen, W.A. 1962. Botanical histoche-mistry. Principles and practice. Ed. W.A. Freeman y Co. S. Francisco. 408 p.
Joblin, K.N. y Naylor, G.E. 1989. Fermentation of woods by rumen anaerobic fungi. FEMS. Microbiology Letters 65: 111-122. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.1989.tb03608.x
Jung, H. y Fahey, C. 1983. Nutritional implications of phenolic monomers and lig¬nin. Review Journal of Animal Science 57(1): 206-219. https://doi.org/10.2527/jas1983.571206x
Jung, H.G.; Fahey, G.C. y Merchen, N.R. 1983. Effects on ruminant digestion and metabolism of phenolic monomers of for¬ages. British Journal of Nutrition 50: 637-651. https://doi.org/10.1079/BJN19830135
Laetsch, W. 1974. The C4syndrome: structural analysis. Annual Review Plant Physiology 25: 25-72. https://doi.org/10.1146/annurev.pp.25.060174.000331
Lascano, C. y Carulla, J. 1992. Quality evaluation of tropical leguminous trees and shrubs with tannins for acid soils. In: Proceedings of XXIX Animal Meetings of the Sociedade Brasileira de Zootecnia 10: 107-129.
Minson, D.J. 1990. Forage in ruminant nutrition. Academic Press, Inc. San Diego CA. 450 p.
Ørskov, E.R.; McDonald, I. 1979. The esti¬mation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. Journal of Agricultural Science 92: 499. https://doi.org/10.1017/S0021859600063048
Paciullo, D.S.; Gomide, J.; Monteiro, E.; Queiros D. y Gomile C. 2002. Características Anatomicas da lamina foliar e do colmo de gramíneas forrageiras tropicais, em funcao do nivel de insercao no perfiho, da idade e da estacao de crescimento. Revista Brasileira de Zootecnia 31(2): 890-899. https://doi.org/10.1590/S1516-35982002000400012
Paniagua R.; Nistal M.; Sesma P.; Álvarez, U.M.; Fraile B.; Anadón R.; Sáez F.J. y De Miguel M.P. 1997. Citología e histología vegetal y animal. Biología de las células y tejidos animales y vegetales. Segunda edición. Editorial McGraw-Hill Interamericana. pp. 775; 765-766; 775-783; 788-796; 811-805; 869; 875-876.
Pond, K.R.; Ellis, W.E.; Lascano C.E. y Akin, D.E. 1987. Fracmentation and flow of grazed coastal bermudagrass through the digetive tract of cattle. Journal of Animal Science 65: 609-618. https://doi.org/10.2527/jas1987.652609x
Queiroz, D.S.; Gomide, J.A. y Maria, J. 2000. Evaluation of top and bottom leaf and stem fractions from tiller of three for¬ages grasses: 1. in vitro disappearance and chemical composition. Revista Brasileira de Zootecnia 29(1): 53-60. https://doi.org/10.1590/S1516-35982000000100008
Rodella, R.A.; Ishiy, C.M. y Maimoni R. 1982. Estudo quantitativo de características anatomicas da folha de duas espécies de Brachiaria. Revista Agrociencia 2: 21-30.
Rodella, R.A.; Ayoub, J. y Maimoni R.C. 1984. Estudo quantitativo de características anatômicas da folha de Panicum maximum Jacq. e Panicum coloratum L. Revista Agrociencia. (Piracicaba) 59: 163-74.
SAS. 1998. SAS User's Guide: Basics. Estadistic Análisis System. Institute. Cary, NC, USA.
Sierra, O.; Bedoya, J.; Monsalve, D. y Orozco, J. 1986. Observaciones sobre Colosuana (Bothriochloa pertusa (L.) Camus) en la Costa Atlántica de Colombia. Pasturas Tropicales. 8(1): 6-9.
Tilley, J.M. y Terry, R.A. 1963. A two-stage technique for in vitro digestion of for¬age crops. Journal of the British Grassland Society 18: 104-111. https://doi.org/10.1111/j.1365-2494.1963.tb00335.x
Twidwell, E.; Johnson, K.; Patterson, J.; Cherney, J. y Bracker, C. 1991. Degradation of switchgrass anatomical tissue by rumen microorganisms. Crop Science 30: 1321-1328. https://doi.org/10.2135/cropsci1990.0011183X003000060033x
Van Soest P.J. y Wine, R.H. 1968. Determination of Lignin an Cellulose in ADF With Permanganate. Journal of the Association of Official Analytical Chemists. 51: 780. https://doi.org/10.1093/jaoac/51.4.780
Van Soest, P.J., Robertson J. y Lewis, B. 1991. Symposium: Carbohydrate Methodology, Metabolism and Nutritional Implications in Dairy Cattle. Journal of Dairy Science 74: 3583-3597. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(91)78551-2
Ventrella, M.C.; Rodellla, R.C. y Curi, P. 1997a. Anatomia e bromatologia de espécies forrageiras de Cynodon Rich. I- Caule. In Reunaiao Anual Da Sociedade Brasileria de Zootecnia. 34, Juiz de Fora-MG.Anais da XXXIV Reuniao da SBZ. 2: 2-5.
Ventrella, M.C.; Rodellla, R.C. y Curi, P. 1997b. Anatomia e bromatologia de espécies forrageiras de Cynodon Rich. II- Caule. In Reunaiao Anual Da Sociedade Brasileria de Zootecnia. 34, Juiz de Fora-MG.Anais da XXXIV Reuniao da SBZ. 2: 6-8.
Waghorn, G.; John, W.; Jones, T. y Shelton, D. 1987. Nutritive value of Lotus corniculatus L. Containing low and medium concentrations of condensed tannins for sheep. Proccedings New Zeeland Society and Production 47: 25-30.
Weimer, P.J. 1996. Why don't ruminal bac¬teria digest cellulose faster? Journal of Dairy Science 79: 1496-1502. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(96)76509-8
Wilkins, R.J. 1972. The potential digesti-bility of cellulose un grasses and its rela¬tionship whit chemical and anatomical parameters. Journal of Agricultural Science 78: 457-464. https://doi.org/10.1017/S0021859600026381
Wilson, J.R. 1973. Variation of leaf charac-teristics with level of insertion on a grass tiller. II. Anatomy. Australian Journal of Agricultural Research 27: 355-364. https://doi.org/10.1071/AR9760355
Wilson, J.R. 1976. Variation of leaf char¬acteristics with level of insertion on a grass tiller. II. Anatomy. Australian Journal of Agricultural Research 27: 355-64. https://doi.org/10.1071/AR9760355
Wilson, J.R. 1983. Effect of water stress on in vitro dry matteer digestibility and chemical composition under tree crops. In: Ahmad Tajuddin Z. (ed.) Proc. Int. Livestock-Tree Cropping Workshop, Serdang, Malasya. FAO. Roma. pp. 39-54.
Wilson, J.R. 1993. Organization of forage plant tissues. In: Jung, H.G., Buxton, D.R., Hatfield, R.D. et al. (eds.) Forage cell wall structure and digestibility. Madison: American Society of Agronomy, Crop Science Society of America, Soil Science Society of America. pp. 1-32. https://doi.org/10.2134/1993.foragecellwall.c1
Wilson, J.R.; Brown, R.H. y Windham, W.R. 1983. Influence of leaf anatomy on the dry matter digestibility of C3, C4, and C3/C4 intermediate types of Panicum species. Crop Science 23(1): 141-146. https://doi.org/10.2135/cropsci1983.0011183X002300010041x
Wilson, J.R. y Hattersley, P.W. 1989. Anatomical characteristics and digestibility of leaves of Panicum and other grass genera of C4 photosynthetic pathway. Australian Journal Agricultural Research 40(1): 125-136. https://doi.org/10.1071/AR9890125
Wilson, J.R.; McLeod, M.N. y Minson, D.J. 1989. Particle size reduction of leaves of a tropical and a temperate grass by cattle. I. Effect of chewing during eating at varying times of digestion. Grass and Forage Science 44: 55-6. https://doi.org/10.1111/j.1365-2494.1989.tb01910.x
Wilson, J.R.; Deinum, B. y Engels, F.M. 1991. Temperature effects on anatomy and digestibility of leaf and stem of tropical and temperate forage species. Netherlands Journal of Agricultural Science 39(1): 31-48. https://doi.org/10.18174/njas.v39i1.16551
Wilson, J. R. y D.R. Mertens. 1995. Cell wall accesibility and cell structure limitations to microbial digestion of forage. Crop Science 35: 251-255. https://doi.org/10.2135/cropsci1995.0011183X003500010046x
Wilson, J.R. y Hatfield, R.D. 1997. Structural and chemical change of cell wall types during stem development: consequences for fibre degradation by rumen microflora. Australian Journal Agricultural Research 48: 165-180. https://doi.org/10.1071/A96051
Wilson, J. R. y Kennedy, P.M. 1996. Plant and animal constraints to voluntary feed intake associated with fibre characteristics and particle breakdown and passage in ruminants. Australian Journal Agricultural Research 47: 199-225. https://doi.org/10.1071/AR9960199
Descargas
