:
Resumen
Se indujeron múltiples brotes mediante organogénesis directa a partir de segmentos nodales de 10 genotipos diferentes de guayaba. Para ello se estableció un sistema de propagación clonal in vitro combinado con inducción rápida de brotes ex vitro para propagar árboles élite. La utilización de segmentos nodales permitió obtener en poco tiempo brotes adventicios adecuados para multiplicación masiva. La respuesta in vitro de los genotipos fue evaluada usando los medios de cultivo MS (Murashige y Skoog, 1962), Mc (Mascarenhas) y WPM (Woody Plant Medium) suplementados con 0,1 mg•L-1 de ácido indolácetico (AIA) y 0,25 mg•L-1 de bencilaminopurina (BAP). El procedimiento de desinfección con hipoclorito de sodio previno eficientemente la contaminación de los explantes después de la inoculación en el medio de cultivo. El mayor porcentaje en la inducción de brotes se logró con 0,25 mg•L-1 de BAP. Los segmentos nodales presentaron de 1 a 2 brotes adventicios por explante después de 15 días de inoculados y de 3 a 7 brotes a los 30 días después del inicio del cultivo. Una vez individualizados los brotes se usaron en una nueva fase de multiplicación masiva en la que se probaron cuatro sustratos diferentes durante el enraizamiento y el endurecimiento. Esta metodología permitió la propagación in vitro de guayaba cuatro semanas después del inicio del cultivo. Los mejores resultados se lograron con el medio WPM que permitió obtener las primeras plántulas enraizadas dos semanas después de la transferencia al sustrato de enraizamiento.
Fabiola Ocampo, Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Agrosavia)
Investigadora profesional asociada, Laboratorio de Genética Molecular Vegetal, Centro de Biotecnología y Bioindustria, C.I. Tibaitatá, Mosquera (Cundinamarca),
Víctor Manuel Núñez, Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Agrosavia)
Investigador principal asociado, Laboratorio de Genética Molecular Vegetal, Centro de Biotecnología y Bioindustria, C.I. Tibaitatá, Mosquera (Cundinamarca).
Ali, N., R.M.S. Mulwa, M.A. Norton y R.M. Skirvin. 2003. Micropropagation of guava (Psidium guajava L). J. Hort. Sci. & Biotech. 78:739-741. https://doi.org/10.1080/14620316.2003.11511692
Amin, M.N. y V.S. Jaiswal. 1988. Micropropagation as an aid to rapid cloning of guava cultivar. Scientia Horticulturae 36: 89-95. https://doi.org/10.1016/0304-4238(88)90010-6
Birosiková, M., K. Spisàková, S. Liptak y V. Pichler. 2004. Micropropagation of mature wych elm (Ulmus glabra Hud). Plant Cell Rep. 22: 640-644. https://doi.org/10.1007/s00299-003-0749-8
Flynn, W.P., L.J. Glicenstein y P.J. Fritz. 1990. Theobroma cacao L.: an axillary bud in vitro propagation procedure. Plant Cell Tiss. Organ Cult. 20: 111-117. https://doi.org/10.1007/BF00114708
George, E., D. Puttock y H. George. 1982. Plant culture media. Editorial Exegetics Limited, Washington, 567 p.
Jaiswal, V.S. y M.N. Amin. 1992. Guava and jackfruit. En: Hammerschlag, F.A. y R.E. Litz (eds.). Biotechnology of perennial fruit crops - Biotechnology in agriculture. C.A.B. Int., Wallingford, UK, pp. 8421-8431.
Kaundal, G.S. e I.S. Deol. 1990. Budding techniques in clonal propagation of guava. Hort. J. 3: 1-2, 37-42.
Lloyd, G. y B. McCown. 1980. Combined Proceedings of the International Plant Propagators Society, pp. 421-427.
Loh, C.S. y A.N. Rao. 1989. Clonal propagation of guava (Psidium guajava) from seedlings and grafted plants and adventious shoot formation in vitro. Scientia Horticulturae 39: 31-39. https://doi.org/10.1016/0304-4238(89)90035-6
Majada, J.P. M.I. Sierra y R. Sánchez. 2000. One step for taxane production through enhanced Taxus propagation. Plant Cell Rep. 18: 825-830. https://doi.org/10.1007/s002990000196
Manoj, K.R., N. Akhtar y V.S. Jaiswal. 2007. Somatic embryogenesis and plant regeneration in Psidium guajava L. cv. Bañarais. Scientia Horticulturae 113(2): 129-133. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2007.02.010
Martin, F.W. 1984. Handbook of tropical food crops. CRC press Boca Ratón, FL, pp. 31-39.
Mohamed-Yessen, M.Y., S.A. Barringer, R.J. Schnell y W.E. Splittstoesser. 1995. In vitro shoot proliferation of guava (Psidium guajava L.) from germinated seedlings. Plant Cell Rep. 14: 525-528. https://doi.org/10.1007/BF00232788
Papadadatou, P. y C.A. Pontikis. 1990. Rapid multiplication of guava seedling by in vitro shoot tip culture. Scientia Horticulturae 45: 99-103. https://doi.org/10.1016/0304-4238(90)90072-M
Peña, H.A., J.A. Díaz y T.R. Martínez. 1996. Fruticultura tropical. ICFES. segunda parte, p. 208.
Pérez-Tornero, O., J. Egea, A. Vanoostende y L. Burgos. 2000. Assessment of factors affecting adventitious shoot regeneration from in Vitro cultured leaves of apricot. Plant Science 158: 61-70. https://doi.org/10.1016/S0168-9452(00)00303-4
Pereira, E. M., E. Petrechen y M.M.P. Benincasa. 1991. Effect of IBA on rooting of guava softwood cuttings of cultivar Rica and Paluma under mist. Cientifica Jaboticabal 19(2):199-202.
Prakash, D.P., P. Narayana-Swamy y S.N. Sondur. 2002. Analysis of molecular diversity in guava using RAPD markers. J. Hort. Sci. Biotech. 77: 287-93. https://doi.org/10.1080/14620316.2002.11511494
Prasad, J., A. Rabbani y R.A. Ram. 1988. Rooting of hardwood cuttings of guava through bottom heat. Progressive Horticulture 20 (1-2):20-23.
Ramírez-Villalobos, M.C. y E. Salazar-Yamarte. 1997. Establecimiento in vitro de segmentos nodales de guayabo (Psidium guajaba). Rev. Fac. Agron. (Universidad de Zulia) 14: 497-506.
Ramírez-Villalobos, M.C., S. León de Sierralta y A. Urdaneta. 1999. Evaluación de desinfectantes superficiales en el establecimiento in vitro de Psidium guajaba L. y Psidium friedrichsthalianum. Rev. Fac. Agron. (Universidad del Zulia) 16: 243-255.
Singh, S.K., R.R. Meghwal, H.C. Sharma y S.P. Singh. 2002. Direct shoot organogenesis on hypocotyl explants from in vitro germinated seedlings of Psidum guajava L. c.v. Allahabad Safeda. Scientia Horticulturae 95: 213-221. https://doi.org/10.1016/S0304-4238(02)00036-5
Toribio, M.; C. Fernández, C. Celestino, M.T. Martínez, M.C. Sanjosé y A.M. Vieitez. 2004. Somatic embryogenesis in mature Quercus rubber trees. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 76: 283-287. https://doi.org/10.1023/B:TICU.0000009245.92828.26
Treore, A.V., S.N. Maximova y M. Guiltinan. 2003. Micropropagation of Theobroma cacao using somatic embryo-derived plants. In Vitro Cell. Dev. Biol. 72: 1-7.
Vilchez J.A., N.R. Albano, R.G. Kosky y D. Agramante. 2005. Embriogénesis somática y regeneración de plantas en Psidium guajava L. Instituto de Biotecnología de las Plantas. Santa Clara, Villa Clara, Cuba. Sin publicar.
Yadava, U.L. 1994. Physicochemical properties of guava produced in Georgia. HortScience 29: 536-537. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.29.5.536g
Descargas
